Définition #
L’hémoculture est un prélèvement sanguin stérile dont la culture va permettre la mise en évidence de la présence de germes aérobies et ou anaérobies. Il permet donc de poser un diagnostic pour savoir si l’état est septicémique ou bactériémie.
- Germes aérobies : germes ayant besoin d’oxygène pour se développer.
- Le flacon aérobie doit contenir un peu d’air pour permettre la culture des germes aérobies, si le prélèvement ne permet pas l’introduction d’air dans le flacon, il faut injecter un peu d’air dans celui-ci à la fin du recueil.
- Germes anaérobie : germes n’ayant pas besoin d’oxygène pour se développer.
- Le flacon anaérobie ne doit pas contenir d’air pendant et après le prélèvement.
Cadre législatif #
- Soin infirmier sur prescription médicale : art. R.4311-7 décret 2004-802 du 29/07/2004
Indications #
- Hyperthermie – hypothermie.
- Pic fébrile, frissons.
- Bilan infectieux.
- Réalisation d’un antibiogramme.
Matériel #
- Flacons d’hémocultures pour différencier les germes :
- 1 flacon d’hémoculture aérobie : germes ayant besoin d’oxygène pour se développer.
- 1 flacon d’hémoculture anaérobie : germes n’ayant pas besoin d’oxygène pour se développer.
- Corps de pompe à usage unique (type vacutainer) stérile si possible.
- Aiguille épicrânienne équipée d’une tubulure et d’un adaptateur au corps de pompe ou aiguille de prélèvement s’adaptant au corps de pompe.
- Garrot.
- Protection papier absorbante à usage unique.
- Sparadrap.
- Produits pour l’antisepsie :
- Respecter les mêmes gammes de produit : polyvidone iodée ou chlorexidine.
- Savon antiseptique.
- Sérum physiologique ou eau stérile.
- Antiseptique dermique.
- Gants stériles à usage unique.
- Compresses stériles.
- Étiquettes laboratoire d’identification patient.
- Bons d’analyses laboratoire, avec pochette de transport.
- Sac à élimination des déchets.
- Conteneur à déchets contaminés piquants et tranchants.
- Désinfectant de surface et chiffonnette.
- Nécessaire à l’hygiène des mains.
| Les aiguilles | |||
| Couleur | Gauge | Diamètre | Utilisation |
| Jaune | 30 Gauges | 0,30 mm | Injection SC / intra-dermique |
| Gris | 27 Gauges | 0,40 mm | Injection SC |
| Brun | 26 Gauges | 0,45 mm | Injection SC |
| Orange | 25 Gauges | 0,50 mm | Injection SC |
| Bleu | 23 Gauges | 0,60 mm | Injection SC / IV / IM – Prélèvement IV |
| Noir | 22 Gauges | 0,70 mm | Injection IM / IV – Prélèvement IV |
| Vert | 21 Gauges | 0,80 mm | Injection IM / IV – Prélèvement IV |
| Jaune | 20 Gauges | 0,90 mm | Prélèvement IV |
| Crème | 19 Gauges | 1,10 mm | Prélèvement IV |
| Rose | 18 Gauges | 1,25 mm | Pompeuse -Transfert |
| Blanc | 16 Gauges | 1,60 mm | Pompeuse -Transfert |
| SC : sous-cutané IV : intra-veineux IM : intra-musculaire | |||
Réalisation du soin #
Installation #
- Vérifier la prescription médicale.
- Prévenir le patient.
- Installer le matériel après vérification des dates de péremptions et de l’intégrité des emballages.
- Installation sur une surface propre et désinfectée au préalable.
- Installer le réniforme et le container à déchets contaminés piquants loin du matériel propre.
- Respecter le triangle d’hygiène, de sécurité et d’ergonomie : Propre (matériel) – Patient – Sale (poubelles).
- Effectuer un lavage simple des mains ou effectuer un traitement hygiénique des mains par frictions avec une solution hydro-alcoolique : hygiène des mains.
- Ouvrir le champ des gants stériles et y déposer aseptiquement l’aiguille épicranienne.
- Ouvrir aseptiquement les paquets de compresses et les imbiber avec le savon antiseptique (mettre un peu de sérum ou eau sur le savon antiseptique afin de le diluer), le sérum physiologique, l’antiseptique dermique, laisser un paquet de compresses sèches.
Choix de la zone de prélèvement #
Les zones de prélèvement : #
- Prélèvement sanguin par ponction veineuse.
- Prélèvement sanguin par ponction artérielle.
- Prélèvement sanguin sur un cathéter central ou une chambre implantable.
- Prélèvement sanguin sur un cathéter artériel : il est déconseillé d’effectuer des prélèvement sanguin pour une recherche de microbiologie (type hémoculture) sur un cathéter artériel puisque le flux sanguin artériel est trop important pour pouvoir capter efficacement les germes dans le cathéter artériel.
Prélèvement sanguin pour hémoculture par ponction veineuse #
- Mettre le garrot et vérifier la présence d’un pouls artériel en contrebas (pouls radial), sinon, risque de thrombose.
- Choisir la veine à ponctionner.
- Favoriser la vasodilatation de la veine, ce qui rend le geste plus facile :
- Demander au patient de serrer le poing.
- Mettre le bras en déclive.
- Tapoter la veine.
- Mettre un linge chaud sur l’avant bras (si nécessaire).
Préparation #
- Mettre la protection sous la zone de ponction.
- Effectuer un lavage antiseptique des mains ou effectuer un traitement hygiénique des mains par frictions avec une solution hydro-alcoolique : hygiène des mains.
- Mettre les gants stériles.
- Pratiquer une antisepsie de la peau en 4 temps :
- Procéder en partant du bas (de la main) et en allant vers le haut (vers le cœur) ce qui permet de désinfecter sous les poils.
- Aller de l’extérieur vers l’intérieur = faire un côté, l’autre côté et terminer par le milieu (site de ponction).
- Ne jamais repasser à un même endroit.
- Utiliser une compresse par passage puis la jeter dans le sac à déchets.
- Respecter le temps de contact de l’antiseptique.
- Nettoyer avec le savon antiseptique.
- Rincer avec le sérum physiologique ou l’eau stérile.
- Sécher avec des compresses stériles sèches.
- Appliquer l’antiseptique dermique.
- Adapter l’aiguille sur le corps de pompe en le maintenant avec une compresse stérile pour ne pas se déstériliser si utilisation d’un corps de pompe non stérile.
Prélèvement #
- Diriger le biseau de l’aiguille vers le haut : ce qui facilite la ponction et diminue l’acte douleur.
- Maintenir la veine et la ponctionner.
- De la main non dominante maintenir l’aiguille, et de la main dominante, insérer les flacons dans le corps de pompe :
- Prélever en premier le sang dans le flacon aérobie : puisque l’aiguille et la tubulure contiennent de l’air, ce qui permettra aux germes aérobies de se développer. En l’absence d’introduction d’air dans le flacon lors du prélèvement, il faut injecter un peu d’air dans celui-ci à la fin du recueil.
- Prélever en second le sang dans le flacon anaérobie.
- Tout en maintenant l’aiguille, desserrer le garrot d’une main.
- Placer une compresse imbibée d’antiseptique sur le point de ponction.
- Retirer l’aiguille et comprimer le point de ponction pour éviter un hématome.
- Jeter immédiatement l’aiguille et le corps de pompe.
- Enlever et jeter les gants.
- Mettre une compresse propre et un sparadrap sur le point de ponction.
- Éliminer les déchets et désinfecter le matériel utilisé.
- Effectuer un lavage simple des mains ou effectuer un traitement hygiénique des mains par frictions avec une solution hydro-alcoolique : hygiène des mains.
- Vérifier la concordance des étiquettes et de l’identité du patient puis étiqueter le flacon, remplir les bons d’analyse et acheminer les flacons au laboratoire d’analyse ou en les ranger à l’intérieur d’une étuve (37°C) à défaut de l’acheminement immédiat.
- Transmission : heure de prélèvement, nombres de prélèvements (n°1, n°2, n°3,…), types de flacons prélevés, température du patient, réactions du patient.
Risques et complications #
- Hématome au point de ponction : bien comprimer le point de ponction après le prélèvement.
- Défaut de reflux du sang : non ponction de la veine, transpercement de la veine, veine trop ou pas assez comprimée.
- Douleur.
- Malaise vagal : stopper le soin, mettre le patient en déclive.
Surveillance #
- Surveillance du point de ponction.
